Биологическая война (Часть 3) - [15]

Лиц, стоящих за биотеррористическими преступлениями, разумеется, меньше всего интересует получение колоний В. anthracis «без завитков» и при выращивании на жидкой питательной среде, в пробирках, формирующих аморфный осадок. Их усилия по получению генетически измененных вариантов сибиреязвенного микроба будут направлены на получение высоковирулентных штаммов, резистентных к антибиотикам и способных преодолевать иммунитет, создаваемый коммерческими вакцинами. Для конструирования генетически измененных штаммов сибиреязвенного микроба используют способы генетического переноса и векторы, созданные для непатогенных бацилл. Принципиальных ограничений методического характера для их применения на В. anthracis не существует. Препятствия «экспериментаторам» в попытках повысить поражающее действие биологических агентов создает только сам микроорганизм (см. разд. 2.2.2 «Ограничения в конструировании штаммов реплицирующихся биологических поражающих агентов с измененными свойствами»),

С 1980-х гг. для В. anthracis разрабатываются способы генетического переноса плазмид, основанные на конъюгации, фаговой трансдукции и различных приемах трансформации[2] (табл. 3.2).

>Таблица 3.2. Конструирование штаммов возбудителя сибирской язвы, резистивных к антибактериальным препаратам

_{Резистентность к антибиотику | Механизм приобретения резистентности | Организация | Источник информации}

К тетрациклину (рВС16) и хлорамфениколу (рС194) | Трансдукция | USAMRHD, Fort Detrick (США) | R. E. Rufel et al. (1984)

К тетрациклину (рВС16) и эритромицину (маркер плазмиды pLS20) | Конъюгацией от В. subtilis совместно с крупной плазмидой pLS20 | То же | Т. M. Koehler et al. (1987)

К тетрациклину путем мутагенеза стрептококковым транспозоном Tn916 | От Streptococcus faecalis DS16C1 к В. anthracis YNR-1 посредством конъюгации | То же | В. E. Ivins et al., (1988)

К рифампицину | Отбор сптонтанных мутантов | Институт прикладной микробиологии. г. Оболенск (Россия) | А П. Померанцев с соавт. (1993)

К пенициллину, римфипицину, тетрациклину, хлорамфениколу, макролидам и линкомицину | Трансформация рекомбинантной плазмидой рТЕС | То же | A. V. Stepanov et al. 1996)

К хлорамфениколу | Трансформация интегрирующейся в хромосому плазмидой рСЕТ | То же | А. П. Померанцев с соавт. (1996)

К канамицину | Плазмидная трансформация | Centre for Applied Microbiology and Research, Porton Down, UK | J. E. Bowen et al. (1999)

К хинолонам | Отбор спонтанных мутантов, но возможна и плазмидная трансформация | Armed Forces Radiobiol. Res. Inst., Maryland, США | T. A. Davies et al. (2001)

К рифампицину | Индукция мутантов УФ-све-том + получение спонтанны: мутантов | Northern Arizona Univ., США | A. F. Vogler et al. (2002)

Зарубежные исследователи обычно ограничиваются сообщениями о переносе в сибиреязвенный микроб тех или иных плазмид с генами антибиотикорезистентности и не касаются вопроса влияния приобретенной антибиотикорезистентности на эффективность антибиотикотерапии сибиреязвенной инфекции. Поэтому Л. И. Марининым с соавт. (1999) были получены аналогичные трансформанты В. anthracis, и в экспериментах по лечению на животных оценена их способность вызывать инфекционный процесс. Методом серийных разведений они определили для трансформантов МПК антибиотиков тетрациклиновой группы при разных условиях культивирования. Их данные показывают, что введение в составе плазмиды рВС16 (см. рис. 2.3) гена Тс^r в возбудитель сибирской язвы может в 50—100 раз повысить его устойчивость к отдельным антибиотикам из группы тетрациклицина (табл. 3.3).

>Таблица 3.3. Величины МПК антибиотиков тетрациклиновой группы для генетически измененного штамма В. anthracis Ч-7

_{| Величина МПК, мкг/см³ при разных условиях культивирования}

^{Штамм | Антибиотик | без капсулообразования | при синтезе капсулы}

Тетрациклин | 0,25 | 0.25 | 4–7

Доксициклин | 0,025 | 0,025 |

Миноциклин[3] | 0,025 | 0,05 |

Тетрациклин | 128 | 128 | 4–7(dBC16)

Доксициклин | 16 | 16 |

Миноциклин | 2 | 8

В экспериментах по лечению было установлено, что среднетерапевтические дозы тетрациклина или доксициклина не предотвращают гибели золотистых хомяков, инфицированных подкожно спорами В. anthracis Ч-7(рВС16), в то время как животные, инфицированные спорами В. anthracis 4–7, выживали (Маринин Л. И. с соавт., 1999).

Предположить, что выделенные от жертв биотеррористического акта или диверсии штаммы В. anthracis являются генетически измененными, можно, сравнивая их фенотипы с фенотипами известных штаммов по маркерам, характерным для генно-инженерного конструирования возбудителей инфекционных болезней с усиленным поражающим действием (антибиотикорезистентность, факторы патогенности, токсины и т. п.). Например, штамм Ч-7(рВС16), полученный Л. И. Марининым с соавт. (1999), отличается от наиболее часто встречающихся в природе штаммов В. anthracis наличием резистентности к тетрациклину, а штамм Ч-7(рОВ12) — еще и способностью вызывать гемолиз эритроцитов (см. ниже). Получить доказательства генно-инженерного вмешательства в геном бактерии можно только молекулярно-генетическими способами —